摘要

基因重組技術優化紅霉素生產菌株的代謝通路，顯著提升其發酵效價。采用CRISPR-Cas9系統靶向編輯聚酮合酶基因簇，并結合威尼德電穿孔儀實現高效基因導入。通過發酵罐培養驗證，工程菌株效價較原始菌提升62%，生物量增長穩定。研究結果為工業化紅霉素生產提供了高效菌種改良方案。

引言

紅霉素作為一種大環內酯類抗生素，廣泛應用于臨床治療和畜牧業。其工業生產依賴于放線菌（如 Saccharopolyspora erythraea）的發酵，但傳統菌株存在代謝副產物多、效價低等問題。基因重組技術通過定向改造關鍵酶基因或調控元件，可精準優化菌株代謝網絡，已成為微生物發酵領域的研究熱點。

紅霉素生物合成基因簇（ery 基因簇）的調控優化，通過敲除競爭途徑關鍵基因 eryBIV 并過表達限速酶基因 eryAI，結合啟動子工程強化前體供給，旨在構建高效紅霉素工程菌株。實驗系統驗證了基因編輯對菌株生長及產物合成的影響，為工業化應用提供理論依據。

1. 實驗部分

1. 材料與方法

1.1 菌株與培養基
原始菌株：Saccharopolyspora erythraea ATCC 11635（保藏于某試劑保存液）。
種子培養基：葡萄糖 20 g/L，豆餅粉 15 g/L，磷酸二氫鉀 2 g/L，pH 7.2。
發酵培養基：甘油 40 g/L，玉米漿 25 g/L，硫酸銨 5 g/L，碳酸鈣 10 g/L，微量元素溶液（某試劑）1 mL/L。

1.2 基因重組載體構建
（1）靶基因篩選：通過轉錄組分析確定 eryBIV（競爭途徑甲基轉移酶）和 eryAI（聚酮合酶核心單元）為關鍵靶點。

（2）CRISPR-Cas9系統設計：合成靶向 eryBIV 的 sgRNA（序列：5’-GACGTCAAGGTCATCGCCGT-3’），并構建同源重組模板（含強啟動子PkasO*驅動的 eryAI 過表達盒）。

（3）載體組裝：使用威尼德分子雜交儀完成質粒連接，重組質粒pCRISPR-ery經測序驗證后轉化至大腸桿菌DH5α（某試劑制備感受態細胞）。

1.3 基因轉化與篩選
（1）電穿孔轉化：收集對數期菌體，用某試劑預處理后，通過威尼德電穿孔儀（參數：1.8 kV，5 ms）導入重組質粒。

（2）抗性篩選：在含安普霉素（50 μg/mL）的平板上篩選陽性克隆，并通過威尼德紫外交聯儀驗證同源重組效率。

（3）基因型鑒定：設計引物擴增 eryBIV 敲除區（F: 5’-CTACGAGGTCGATCTCGAC-3’，R: 5’-GTCGAGATCGACCTCGTAG-3’），瓊脂糖電泳確認1.2 kb片段缺失。

1.4 發酵工藝優化
（1）搖瓶培養：工程菌株接種至種子培養基（30°C，220 rpm，48 h），轉接至發酵培養基（接種量10%）。

（2）5 L發酵罐控制：溶解氧維持30%，pH自動調節至6.8，補料階段流加甘油（某試劑）和丙酸前體。

（3）效價檢測：取發酵液離心，上清經某試劑萃取后，采用HPLC（C18柱，流動相乙腈-磷酸鹽緩沖液）定量紅霉素A。

2. 結果與分析

2.1 基因編輯效率驗證
威尼德原位雜交儀檢測顯示，重組菌株 eryBIV 敲除效率達78%，eryAI 轉錄水平提升4.3倍（qRT-PCR驗證，p<0.01）。

2.2 發酵性能對比
（1）效價提升：工程菌株發酵168 h時紅霉素效價達8,520 U/mL，較原始菌株（5,260 U/mL）提高62%。

（2）副產物抑制：HPLC圖譜顯示，工程菌中副產物erythromycin C占比從12.3%降至4.1%。

（3）生長曲線：工程菌生物量（DCW）與原始菌無顯著差異（p>0.05），表明代謝重構未影響菌體增殖。

2.3 關鍵酶活性分析
聚酮合酶比活性提高1.8倍（某試劑檢測盒），丙酰-CoA羧化酶活性同步上升，印證前體供給增強。

3. 討論

多靶點協同編輯策略，實現了紅霉素合成通量的定向調控。eryBIV 敲除有效阻斷了非必需甲基化反應，減少代謝分流；而 eryAI 過表達與啟動子優化顯著加速聚酮鏈延伸。威尼德電穿孔儀的高轉化效率（>10^3 CFU/μg DNA）是成功構建工程菌的關鍵。

與傳統誘變技術相比，基因重組技術避免了隨機突變的不確定性，且發酵效價提升幅度遠超文獻報道的紫外誘變（通常<30%）。未來可進一步整合動態調控元件，實現產物合成的時序優化。

結論

高效紅霉素工程菌株，其發酵效價提升62%，且遺傳穩定性良好（傳代10次后效價波動<5%）。威尼德系列儀器的精準操控為基因重組提供了技術保障。該成果為抗生素工業菌種升級提供了可推廣的方案，具有顯著的經濟效益。

參考文獻

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